martes, 22 de mayo de 2012

tarea de unidada 7






                          INSTITUTO TECNOLÓGICO DE CIUDAD ALTAMIRANO
                                                            
                                                                      
                                                              Que Presenta
                                                                 tarea  de la unidad 7


Nombre del Alumno
luz eugenia ruiz najera
Número de Control
078930132
                                                                
                                                           Carrera Lic biología
                                                                     




                             Ciudad Altamirano, Gro.México. 22de mayo del 2012






posible   que la  maquina  eucarionta  de  traducion  ribosomica factores  enzima, rnat pueda la  traducción de una bacteria  explica  identifique los inconveniente  que se encontraría






si se puede realizar el proceso  de traducción  eucarionta en  una bacteria  mediante  La síntesis de proteínas involucra dos eventos: la transcripción y la traducción. En el primer caso, a partir de una cadena de ADN, se forma el ARN mensajero (ARNm). La traducción viene a ser la síntesis de polipéptidos o proteínas.
Una vez obtenida la copia del mensaje genético en forma de ARNm , este ARNm va a dirigir la síntesis de proteínas en los ribosomas. Los ribosomas van a interpretar la secuencia completa de nucleótidos (codones) del ARNm como la información necesaria para la unión de aminoácidos específicos mediante enlaces peptídicos. La correspondencia entre los nucléotidos del ARNm y los aminoácidos que forman una proteína es lo que se denomina código genético.
La traducción se lleva a cabo en los ribosomas que están formados por distintos tipos de ARNr (ARN ribosomal) y proteínas. La traducción es un proceso que se da en forma muy parecida en procariotas y eucariotas. Lo primero, es activar los aminoácidos, es decir, unirlos a un ARNt (ARN de transferencia) específico, esto ocurre en el citoplasma y la cataliza la enzima aminoacil ARNt sintetasa.
entonces el nucleofilico rebimucleico de calcio H2 se transforma en aminoacido monosacarido pico ctm
El ARNt además de llevar undo el aminoácido, va a reconocer el codón del ARNm, así una vez activados los aminoácidos, va a tener lugar la síntesis de proteínas. Durante la traducción, en la subunidad mayor del ribosoma se localiza la enzima peptidiltransferasa, que se encarga de la unión de los aminoácidos mediante enlace peptídico. En el caso de los ribosomas procariotas (bacterias), la subunidad mayor es denominada 50 S, en tanto la menor es 30 S. La enzima peptidiltransferasa se localiza en la subunidad mayor (50 S).
La enzima peptidil transferasa es una ribozima aminoacil transferasa (con número EC 2.3.2.12) que realiza la función esencial de los ribosomas. Se encarga de la formación deenlaces peptídicos entre aminoácidos adyacentes durante la traducción de ARN mensajero y, por tanto, la síntesis proteica. No obstante, estas enzimas están implicadas también en procesos no relacionados con la traducción. En bacterias, la actividad peptidil transferasa se encuentra en la subunidad 50S (componente 23S); en cambio, en eucariotas es la subunidad 60S (componente 28 S) la que lo alberga.

biblegrafia
Gu Z, Harrod R, Rogers EJ, Lovett PS (June 1994). «Anti-peptidyl transferase leader peptides of attenuation-regulated chloramphenicol-resistance genes». Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 91 (12):  pp. 5612–6. PMID 7515506.


























domingo, 20 de mayo de 2012

unidada 8 REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GENÉTICA


                             INSTITUTO TECNOLÓGICO DE CIUDAD ALTAMIRANO
Que Presenta
unidada 8     REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GENÉTICA

Nombre del Alumno
luz eugenia  ruiz najera

Número de Control
08930132
                                                                 
                                                                 Carrera Lic biología
                                                                          
                                      
                             Ciudad ALTAMIRANO, Gro.México. 20de mayo del 2012
                           
        unidad 8     REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GENÉTICA

                                   
      este trabajo tiene la finalidad  conocer  la regulación de laexpresion genética  de los células eucarionta  y procarionte los eucariontes, en su mayoría, son organismos complejos. Los organismos eucariotas superiores están constituidos por numerosos órganos diferenciados, estando cada órgano constituido por diferentes tipos de célula. Sin embargo, los miles de millares de células que constituyen estos organismos provienen de una sola célula diploide y para llegar a este resultado, se ponen en juego dos procesos: la multiplicación celular y la diferenciación. La diferenciación debería ser el resultado de "encender" y "apagar" diferentes genes. Pero para obtener un organismo "funcional" no es suficiente que sus células se diferencien. También hace falta que éstas respondan de manera adecuada al ambiente. Para esto es necesario que la expresión de cada uno de los genes autorizados a expresarse para la diferenciación esté perfectamente regulado.
En las bacterias, los sistemas de regulación de expresión de los genes son relativamente sencillos, porque la regulación se limita casi exclusivamente a un control de la transcripción, traduciéndose todo mensaje transcrito inmediatamente en proteínas. El objetivo de la regulación de genes se convierte en el ajuste de la maquinaria enzimática de la célula al ambiente nutricional y físico inmediato con el fin de permitir el crecimiento y la división de la célula bacteriana. En eucariontes, la cosa no es tan sencilla. En estos organismos, el objetivo de la regulación de la expresión génica es garantizar la ejecución de las decisiones precisas del desarrollo que llevan a la diferenciación celular. En otras palabras,garantizar que el gen correcto se active en la célula correcta en el momento correcto.
Los organismos eucariotas tienen determinadas características que hacen que sus mecanismos de regulación génica sean diferentes de los procariotas. Así, vemos que del genoma eucariota, sólo el 7% del DNA es codificador. El resto del genoma está constituido por secuencias, muchas de ellas repetidas de 103 a 106 veces, a veces en tándem, cuyo rol aún se desconoce en su gran mayoría. Por ejemplo, el DNA satélite representa el 15% del genoma. El gen y la proteína eucariotas no son colineales ya que el transcrito primario del mRNA posee intrones que se pierden durante la maduración de esta molécula. Los mRNA eucariotas son monocistrónicos a diferencia de los procariotas y no poseen operones. El hecho de poseer un número diploide de cromosomas, hace que se establezcan relacioentre los alelos.
En eucariontes, los sistemas de regulación y selección son multietapa y a menudo son arborescentes. Esto disminuye considerablemente el esfuerzo de la selección estando ya preseleccionados determinados genes en una célula dada (diferenciación). Esta preselección y la multiplicidad de niveles sucesivos de regulación permiten un ajuste de la velocidad y de la intensidad de la reacción a los estímulos. La arborescencia permite la obtención de respuestas pleiotrópicas cuando los estímulos se dirigen a un nivel elevado, es decir a las primeras etapas de la regulación y de una respuesta fina, muy selectiva y muy rápida cuando se dirigen a un nivel bajo, es decir, a las últimas etapas de la regulación. No existe, pues, un modelo general de regulación como es el caso de los procariontes sino toda una serie de posibilidades que se encadenan, desde una estructura especial de la cromatina (nivel alto de regulación) hasta una regulación postraduccional (última etapa posible de regulación). 

                                                                         OBJETIVO GENERAL
Conocer los niveles  de regulación  de  la expresión  genética    en procarionte y eucarionte
                                                            

OBJETIVO  ESPESIFICO
Identificar  operón  lactoso    y operón  triptófano

Metodología
esta  investigación  se realizo median una investigación documental  mediante   libros  y otras fuentes de información   que  permite  realiza     una selección  de información  concreta para nuestra   respectiva  investigación


UNIDAD 8 REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GENÉTICA
La estrategia procariota pretende alcanzar las máximas tasas de proliferación cuando el entorno se lo permita. En cambio, la estrategia eucariota ha de ser distinta puesto que en los organismos pluricelulares donde el medio intercelular es relativamente constante, el control génico está al servicio de la especialización celular.
La genómica parece indicar que
  • el número de genes no varía mucho entre las especies: los vertebrados tienen como mucho el doble de genes que los invertebrados;
  • el número de genes no sirve para explicar la diversidad evoultiva por mutación o duplicación génica;
  • la variabilidad de los genes se debe a la duplicación de genes en vez de la creación de genes nuevos.
  • la complejidad evolutiva se correlaciona con el aumento de genes reguladores: en las levaduras hay un gen regulador por cada 20 funcionales, pero en humanos hay más de 3 000 reguladores para unos 30 000 genes
Por eso, la complejidad de los organismos emerge de una regulación de la expresión génica cada vez más elaborada y no de cambios o mutaciones en los genes estructurales o enzimáticos: la secuencia de las proteínas se conserva mucho a través de distintas especies, sin cambios importantes mientras que los cambios en el orden de los elementos del promotor o de sus elementos reguladores provocan alteraciones drásticas
Puntos  de regulación 
En cada  tido  celular   nose   expresan mas  del 10-20% de los  genes   distiguiendo  a 3  grupos
Los que dan   un RNAm poco abundante 
Los que dan  RNm mediante  abundante
Unos  pocos   genes  que  dan  RNAm muy  abundante
puntos en los que se puede controlar la expresión génica de eucariota
Control pretranscripcional:
determina la accesibilidad de la comatina a la maquinaria de transcripción. Lo afectan el superenrollamiento y la metilación
Control transcripcional:
determina la frecuencia y/o velocidad de inicio de transcripción mediante la accesibilidad de los sitios de inicio, la disponibilidad de los factores de transcripción y la eficacia de los promotores


Control postranscripcional:
es el que se ejerce una vez que el transcrito ha terminado de sintetizarse. Puede ser de varios tipos:
• Control de la maduración: Según se pueda realizar elayustamiento del RNA, se conseguirán distintas cantidades del producto génico.
• Control del transporte: la mayoría de los RNA tienen que salir al citoplasma para ejercer su función. Para ello han de atravesar los poros de la membrana nuclear, donde se puede seleccionar los RNA que serán transportados y los que no.
Control de la estabilidad: la vida media del RNA se puede regular mediante la expresión de las RNasas o de proteínas estabilizadoras del mRNA en el citoplasma.
Control traduccional: esta regulación se ejerce sobre la frecuencia con que se comienzan a traducir los mRNA. También puede afectar la frecuencia con la que las proteínas maduran y la disponibilidad de efectores enzimáticos, pero eso se verá en otro tema.
.2 Regulación de la transcripción en organismos procarióticos.

Terminología

Unidad de transcripción
Los genes/cistrones/ORF que se transcriben bajo en control de un mismo promotor
Promotor
Secuencia reconocida específicamente por la RNA polimerasa para iniciar la transcripción de una unidad de transcripción.
Cistrón
Cada una de las partes de un transcrito que darán una biomolécula funcional (proteína o RNA). En el caso de las proteínas, coincide con un marco abierto de lectura (ORF).
Terminador
Conjunto de secuencias que marcan el fin de la transcripción de una unidad de transcripción.
Operón
La unidad de transcripción (promotor, cistrones y terminador) junto con las secuencias/genes adicinales que sirven para regularlo.
Polaridad
Es el efecto de una mutación en un gen sobre la expresión de otros cistrones distales dentro del mismo operón
Proteína reguladora
Aquella que controlará la expresión de un operón. Pueden ser activadoras o represoras.
Operador
Secuencia del promotor que es reconocida por una proteína reguladora.
Efector
Biomolécula no proteica que controla la activación o inactivación de la proteína reguladora. Las hay inhibidoras y (co-)represoras.
Regulón
Conjunto de genes/operones que responden al unísono por la acción de un regulador. Por ejemplo los regulones de choque térmico, represión catabólica, o respuesta SOS.

Cambios en la estructura del DNA
-MetilaciónLa metilación provoca un cambio de estructura en el apareamiento entre las bases nitrogenadas que puede alterar su reconocimiento por algunas proteínas. El más conocido es el de la metilasa dam que reconoce la secuencia GATC y metila la A.La mayor parte de los genes cuya exprexión se ve reprimida por la metilación son genes cuya expresión sólo se necesita durante la replicación (único momento en el que una cadena del DNA está transitoriamente hemimetilado), permaneciendo reprimidos el resto del ciclo celular.
-Superenrollamiento Para mantener una situación homeostática en la célula en relación al número de superenrollamientos es necesario mantener con una regulación contraria los genes topA (codifica la topoisomerasa I) y gyrA y gyrB (determinan las dos subunidades de la DNA-topoisomerasa II).
. Cambios en la interacción entre el DNA y la RNA-polimerasa
Lo provocan aquellos cambios que, sin alterar ni la estructura del DNA ni la de la RNA-polimerasa, sí que afectan la interacción entre ambas. Es necesaria la comparecencia de una tercera molécula, habitualmente una proteína (aunque a veces puede ser RNA). Tres mecanismos pueden alterar esta interacción:
•             Modificación de la interacción entre RNA polimerasa y el promotor debido a la existencia de una proteína reguladora y un efector
•             Secuencias reguladoras a distancia
•             Modificación de la terminación: antiterminación

8.2.1 Operon de Lactosa (Control positivo).
el modelo genético del Operón que permite comprender como tiene lugar la regulación de la expresión génica en bacterias.
Un Operón es grupo de genes estructurales cuya expresión está regulada por losmismos elementos de control (promotor y operador) y genes reguladores.
                             
v  Los genes estructurales: llevan información para polipéptidos. Se trata de los genes cuya expresión está regulada. Los operones bacterianos suelen contener varios genes estructurales, son poligénicos o policistrónicos. Hay algunos operones bacterianos que tienen un solo gene estructural. Los operones eucarióticos suelen contener un sólo gen estructural siendo monocistrónicos.
v  El promotor (P): se trata de un elemento de control que es una región del ADN con una secuencia que es reconocida por la ARN polimerasa para comenzar la transcripción. Se encuentra inmediatamente antes de los genes estructurales. Abreviadamente se le designa por la letra P.
v  El operador (O): se trata de otro elemento de control que es una región del ADN con una secuencia que es reconocida por la proteína reguladora. El operador se sitúa entre la región promotora y los genes estructurales. Abreviadamente se le designa por la letra O.
v  El gen regulador (i): secuencia de ADN que codifica para la proteína reguladora que reconoce la secuencia de la región del operador. El gen regulador está cerca de los genes estructurales del operón pero no está inmediatamente al lado. Abreviadamente se le denomina gen i.
v  Proteína reguladora: proteína codificada por el gen regulador. Está proteína se une a la región del operador.
v  Inductor: sustrato o compuesto cuya presencia induce la expresión de los genes.
Elementos que intervienen en la regulación de la expresión génica en bacterias. Elementos del Operón.
Elementos de control
Promotor
Operador
Moléculas difusibles
Proteínas reguladoras
Efectores
Inductores
Genes Estructurales
Codifican para polipéptidos
Gen regulador
Codifica para proteína reguladora

OPERÓN LACTOSA: CONTROL POSITIVO



Elementos del operón lactosa

·         El gen z+: codifica para la -galactosidasa que cataliza la hidrolisis de la lactosa en glucosa más galactosa.
·         El gen y+: codifica para la galactósido permeasa que transporta -galactósidos al interior de la célula bacteriana.
         El gen a+: codifica para la tiogalactósido transacetilasa que cataliza la transferencia del     grupo acetil del acetil Coenzima A al 6-OH de un aceptor tiogalatósido. Este gen no está relacionado con el metabolismo de la lactosa
      Operón lactosa en ausencia de lactosa

en presencia del inductor (la lactosa), este se une a la proteína reguladora que cambia su conformación y se suelta de la región operadora dejando acceso libre a la ARN-polimerasa para que se una a la región promotora y se transcriban los genes estructurales. Por consiguiente, la presencia del inductor hace que se expresen los genes estructurales del operón, necesarios para metabolizar la lactosa. 
Operón lactosa en presencia de lactosa
También es conveniente recordar que los tres genes estructurales del operón lactosa se transcriben juntos en un mismo ARNm, es decir que los ARN mensajeros de bacterias suelen ser policistrónicos, poligénicos o multigénicos. Sin embargo, en eucariontes los mensajreos suelen sen monocistrónicos o monogénicos, es decir, corresponden a la transcripción de un solo gen estructural



Operón lactosa: ARNm multigénico o policistrónico
 8.4.2 Operon de Triptofano.
El operón triptófano (operón trp) es un sistema de tipo represible, ya que el aminoácido triptófano (Correpresor) impide la expresión de los genes necesarios para su propia síntesis cuando hay niveles elevados de triptófano
·          Genes estructurales: existen cinco genes estructurales en el siguiente orden trpE-trpD-trpC-trpB-trpA.
·         Elementos de control: promotor (P) y operador (O). El promotor y el operador están al lado de los genes estructurales y en el siguiente orden: P O trpE-trpD-trpC-trpB-trpA. Curiosamente, las enzimas codificadas por estos cinco genes estructurales actúan en la ruta metabólica de síntesis del triptófano en el mismo orden en el que se encuentran los genes en el cromosoma.
·         Gen regulador (trpR): codifica para la proteína reguladora. Este gen se encuentra en otra región del cromosoma bacteriano aunque no muy lejos del operón.
·         Correpresor: triptófano.

 En el siguiente esquema se indican los elementos del Operón Triptófano: 
Los genes estructurales del operón triptófano se encuentran en el mismo orden que actúan las productos codificados por ellos en la ruta biosintética del triptófano (ver el siguiente esquema).
Operón triptófano: en ausencia de triptófano

En ausencia de triptófano, o cuando hay muy poco, la proteína reguladora producto del gen trpR no es capaz de unirse al operador de forma que la ARN-polimerasa puede unirse a la región promtora y se transcriben los genes del operón triptófano.
 8.3 Regulación de la transcripción en organismos eucarióticos

Señales que modifican la transcripción

Los tipos de señales que pueden alterar la transcripción de un gen puede ser:
Señales hormonales que interaccionan con un receptor de la membrana. En la mayoría de los casos, la señal externa provoca la aparición del segundo mensajero intracelular. La cascada de transducción de señal subsiguiente produce un regulador de transcripción específico.
En el caso de las hormonas esteroideas, el receptor está dentro de la célula y es el conjunto hormona-receptor el que actúa de regulador.
Las señales nutricionales e iónicas suelen darse en eucariotas unicelulares solamente porque son los únicos a los que va a afectar el medio en el que están creciendo. La excepción se encuentra en los hepatocitos (es el regulador de la concentración sanguínea de muchos metabolitos) y las células en cultivo.

Contactos intercelulares especialmente durante el desarrollo embrionario. La sinapsis también pertenece a este grupo.


Proteínas que modulan la transcripción
actuar como reguladores tanto moléculas de RNA como proteínas. Entre las proteínas, las hay que forman parte de la holoenzima polimerasa (los factores de transcripción),


1.- Activadores transcripcionales
Los activadores son la proteínas que se van a unir a los elementos distales (SDE y potenciadores) para activar la transcripción. Son específicos de unos pocos promotores —por lo que no estarán en todos los tipos celulares—, reconocen entre 6 y 14 pb en el promotor y suelen tener dos dominios estructurales:
  • El dominio de unión a DNA (DNA binding domain) , que consta de 60 a 100 aminoácidos consecutivos.
  • El dominio de activación de la transcripción que consta de 30 a 100 aminoácidos que no tienen por qué ser consecutivos. 


·         La presencia de estos dominios las convierte en proteínas modulares en las que el dominio de unión y el de activación pueden funcionar independientemente.



         

 
3.- Transactivadores

 Son aquellos que directamente ejercen su acción interaccionando con el complejo de iniciación formado en el promtor basal, bien sobre la propia polimerasa o, más normalmente, sobre una de las TAF o de los TFII, para activar o reprimir la transcripción, puesto que no son actividades exclulyentes

Potenciadores

La mayoría de los ejemplos anteriores son reguladores del tipo SDE (secuencias distales específicas). Pero la fuente de regulación más potente es al de los elementos distales: los potenciadores (enhancers o intensificadores). Su función es la de amplificar la transcripción del promtor incluso más de 1000 veces. Los hay específicos del tejido —sólo activan la transcripción de su gen en determinados tejidos—, específicos de la etapa de desarrollo e inducibles por alguna señal externa como hormonas, metales pesados, choque térmico, infección viral, etc. Necesitan la mediación de un coactivador.

Silenciamiento de genes

La unión inespecífica de proteínas reguladoras es un problema importante en los organismos con genomas grandes. Para combatirla, los eucariotas han hecho que los genes tengan en torno a 5 dianas para proteínas reguladoras diferentes. Esta estrategia es útil para los activadores de la transcripción porque es una estrategia eficiente y ahorra esfuerzo. Una estrategia similar no es factible con los inhibidores de la transcripción, por lo que se da poca regulación por silenciamiento.
El silenciamiento de un gen puede ocurrir por:
  • la inactivación por interacción con un regulador
  • el silenciamiento génico postranscripcional (PTGS, también denominada cosupresión o extinción génica)
  • la metilación del DNA en vertebrados (directamente ligada al superenrollamiento y al silenciamiento).

Inactivación mediante una proteína reguladora

Se consigue uniendo una proteína reguladora a cualquiera de los distintos elementos que forman los promotores.
Los que reconocen los elementos distales
• el silenciador específico de tejido (tse): se encarga de silenciar en cualquier célula los genes que son específicos de células hepáticas
• las hormonas esteroideas comentadas anteriormente
• el gen Pit-1
Los que reconocen los elementos proximales
• la proteína CDPC: recibe el nombre de «desplazamiento de CAAT» porque impide que la caja CAAT sea reconocida por sus proteínas específicas
Los que reconocen el promotor basal
• el represor global Dr1/DRAP1: es un heterodímero que se une a TBP para evitar que interactúe con TFIIB










BIBLIOGRA

  1.-. Avers, Ch. 1987. Biología Celular.
·         2.- .Brown,C.M; I. Campbell y F.G. Priest 1989. Introducción a la Biotecnología.
·         3 - Clark. 1996. Plant Molecular Biology.
·         4.- De Robertos y Robertis, F. K. 1987. Biología celular y molecular.
·         5.- Gardner, E. J. 1979. Principios de genética.
·         6 - Glick y Pasternak. 1998..Molecular biotecnology.
·         7 - Griffiths et al. 1997. Genetica. McGraw-Hill/Interamericana. España.
·         8 - Griffiths et al. 1999. Genetica moderna. McGraw-Hill/Interamericana. España.
·         9.- . Karp, G. 1992. Biología celular
·         10.- . Levine, R. 1981. Genética. Compañía.
·         11.- Scriban, R. 1992. Biotecnología.
·         12 - Smith y Wood. 1998. Biologia molecular y biotenología. Addison-Wesley 
·                Iberoamericana
·         13.- . Stanfield, W. 1978. Genética.
·         14.- Strickberger, M.W.1976. Genética. 
·         15 - Tamarín, R. 1996. Principios genetica. Reverté.España.
·         16.- Trevan, M.A; S. Boffey; K.H. Goulding y P. Stanbary 1990. Biotecnología.
·         17.- Winchester,A.M.1976. Genética.
·         18.- Wiseman, A. 1986. Principios de Biotecnología.
·         19.- Waller, J.M y E.B. Gingold. 1988: Biología Molecular y Biotecnología.
·         20.- Wallace, R.A: Jack,L. King y Gerald P. Sanders. 1991 Biología Molecular y Herencia.
·          




   



domingo, 13 de mayo de 2012

UNIDAD 7 TRADUCCIÓN DE UNIDAD



                         INSTITUTO TECNOLÓGICO DE CIUDAD ALTAMIRANO GRO

                                                                        Que Presenta
                                                     UNIDAD 7 TRADUCCIÓN DEL ARN MENSAJERO      
                                                      
                                                                        Nombre del Alumno
                                                          LUZ EUGENIA  RUIZ   NAJERA

                                                                       Número de Control 
                                                                                 08930132
                                                                      
                                                                          Carrera Lic biología 
                                               
                                             Ciudad ALTAMIRANO, Gro.México. 13 de mayo del 2012  
                                                                               
                                                                         

                                                UNIDAD 7 TRADUCCIÓN DEL ARN MENSAJERO    
                                      
             Una vez que el ARNm se encuentra en el citoplasma, es reconocido por el ribosoma mediante secuencias específicas (en bacterias) y por la caperuza (en eucariotas). En el ribosoma se lleva a cabo el proceso de traducción. En este momento cobra importancia el ARNt, que funciona como adaptador entre aminoácidos y ARNm                      
Los ARNt tienen una región que se une a un aminoácido específico y otra que reconoce un triplete de nucleótidos en el ARNm (anticodón). La traducción comienza cuando el ribosoma reconoce ciertas secuencias en el extremo 5’ del ARNm (en bacterias) o la caperuza (en eucariotas) y se mueve a lo largo del mensajero hasta que encuentra el primer codón AUG, que codifica para metionina (o formil-met en bacterias). Este codón funciona como sitio de inicio. A medida que avanza la traducción, distintos ARNt se van uniendo al codón que le corresponda, se forma el enlace peptídico entre los aminoácidos, y por último se libera el ARNt “descargado”, quedando unido al ribosoma el último ARNt incorporado “cargando” con la cadena peptídica en crecimiento.

                                                               Objetivo  general
                                Conocer    el dogma  central  Biologia  molecular
                                                      
                                                           Objetico    especifico
Conocer   las  caracteristicas  diferentes   de los ribosamos   procariontes   eucariontes
Conocer  las  modificacion  postraduccionales
                                                                   
                                                                    Metodología
         Para realizar  este trabajo realizo una  investigación  documental   el libros  en diversa páginas  de internet  permitieron   hacer en un resumen   para identificar los mas importante 




                   UNIDAD 7 TRADUCCIÓN DEL ARN MENSAJERO
 La traducción del mRNA consiste en: la síntesis de las proteínas mediante la unión de aminoácidos según el orden establecido por la secuencia de nucleótidos del mRNA y el código genético.
7.1 El código genético
El código genético se encarga de descifrar a qué triplete de nucleótidos corresponde cada residuo de aminoácido.
El código genético tal cual se descubrió es casi universal: los mismos codones determinan los mismo aminoácidos en todos los organismos (eucariotas y procariotas).
Sin embargo, existen variaciones del código genético circunscritas a mitocondrias y algunos protozoos. Son 14 los codones que pueden acabar variando, pudiendose encontrar algunos casos como las mitocondrias de levaduras en las que son 9 los codones distintos. En procariotas, el codón UGA que en determinados contextos puede determinar el aminoácido selenocisteína
La señal de inicio comúnmente utilizada en la traducción es AUG. De forma muy excepcional, los procariotas pueden usar los codones GUG o UUG como inicios de traducción, incorporando en cualquiera de los casos fMet.
Las señales de parada son las casi universales UAG (ámbar), UAA (ocre), y UGA (ópalo).
La frecuencia con la que se usa un aminoácido un un marco abierto de lectura se correlaciona bastante bien con la cantidad de codones que utiliza.




7.2 El papel del ARN en la síntesis de proteínas.

RNA mensajero, y se encarga de llevar la información de los genes a formar proteinas.

RNA trasferente (RNAt) funcionan como trasportadores que llevan los aminoácidos hasta el RNAm durante el proceso de traducción
RNA ribosomicos (RNAr) son componentes de los ribosomas, complejos moleculares que actuan coordinando el ensamblaje de las proteinas
hnRNA: es el precursor del mRNA. Su tamaño es muy heterogéneo (de 0,2 a 30 kb, aunque la mayoría entre 5 y 8 kb) y la vida media muy breve. En cuanto se sintetiza, se le unen proteínas, formando el hnRNP
pre-rRNA: es el precursor de los rRNA (el más abundante en las células) y se localiza en el núcleo. La mitad del que se sintetiza se degrada en el núcleo sin llegar a formar un rRNA maduro
pre-tRNA: es el precursor de los tRNA.
snRNA: se trata de RNA nucleares pequeños y monocatenarios que miden de 50 a 300 nt. Tienen sus propios promotores
snoRNA: RNA nucleolares pequeños y monocatenarios que se obtienen por el ayuste de los intrones, aunque algunos tienen sus propios promotores. Actúan asociados a proteínas, formando las snoRNP
miRNA: es el microRNA, pequeñas moléculas de RNA monocatenario que regulan la transcripción de determinados mRNA mediante ribointerferencia, o se unen al 3'UTR de un mRNA y bloquean su traducción
siRNA: son los RNA interferentes pequeños que se obtienen por la degradación de dsRNA en fragmentos de 21 a 25 nt y que permiten degradar los mRNA







 7.2.2 Estructura ribosomal.
7.2.3 Procariótico
En una célula procariota suelen existir entre 10.000 y 15.000 ribosomas, orgánulo portador de la mayoría de las actividades enzimáticas implicadas en la biosíntesis. Contienen el sitio A o aceptor o aminoacilo, donde entra el aminoacil-tRNA. El sitio P, peptidil o donador, es donde está el peptidil-tRNA. También está el sitio E o de eyección o salida que está ocupado por el tRNA que ya no porta aminoácido. En la parte superior de la subunidad mayor, cerca del enlace que une los tRNA con su péptido y su aminoácido, está el sitio peptidiltransferasa

                



7.2.4 Eucariótico
La estructura eucariotas es básicamente el mismo que el de procariotas, con las diferencias principales:
  • El ribosoma y sus subunidades son más grandes (40S + 60 S → 80S).
  • Los rRNA son mayores y hay más proteínas por subunidad ribosómica.
  • La subunidad mayor contiene los rRNA 28S y 5S, pero además una 5,8S adicional que no existe en los procariotas.
  • El ribosoma no tiene sitio E.
·          

·         7.3 Etapas de la síntesis de proteínas en organismos procarióticos.
·         J. Shine y L. Dalgarno describieron la complementariedad entre el extremo 5' los mRNA y el rRNA 16S de la subunidad pequeña, para que el AUG se coloque en el sitio correcto.




Las enzimas que unen los aminoácidos a sus tRNA son las aminoacíl-tRNA ligasas, una para cada aminoácido en bacterias, que reconoce los diferentes tRNA que usa el aminoácido. Las hay de dos tipos y su papel es esencial para la fidelidad de la síntesis proteica.
La traducción de un mensaje del mRNA puede dividirse en tres fases: iniciación, elongación y terminación, fases en las que se necesitan factores de traducción: factores de iniciación (IFs), factores de elongación (EFs) y factores de liberación (RFs).
INICIO DE LA TRADUCCIÓN
Se comienza con la subunidad menor sola. IF-1 se une a la base del sitio A para forzar que el primer fMet-tRNA entre en el sitio P.

IF-3 se le necesita para estabilizar la subunidad 30S IF-2 sirve para depositar el aminoacil-tRNA (fMet-tRNA en este caso) en el ribosoma.

Los 3 IF junto con el mRNA, el fMet-tRNA y la subunidad 30S forman el complejo de iniciación
ELONGACIÓN
El crecimiento de la cadena polipeptídica en el ribosoma es un proceso cíclico que se repite tantas veces como aminoácidos se incorporen. Cada ciclo consta de 4 pasos: ubicación del nuevo aa-tRNA, verificación o corrección del aminoácido introducido, formación del enlace peptídico y translocación. Los sitios E y A cooperan negativamente puesto que nunca que encuentran ocupados a la vez.

-Ubicación
El tRNA aminoacilado se dirige al sitio A con el factor de elongación EF-Tu (EF-1A), que al igual que IF-2, lleva GTP. Cuando el aminoacil-tRNA se aloja en el sitio A, el GTP se hidroliza y se libera EF-Tu/GDP.
Corrección
Para dejar el aa-tRNA en su sitio, EF-Tu tiene que hidrolizar el GTP. Esto es un proceso relativamente lento, que da tiempo a verificar el apareamiento codón-anticodón.
Transpeptidación
La cadena polipeptídica enganchada al tRNA del sitio P se transfiere sobre el aminoácido transportado por el tRNA del sitio A. Esta transferencia la cataliza el sitio peptidil transferasa de la subunidad 50S

-Translocación (traslado)
El tRNA descargado del sitio P se transfiere al E y el tRNA que tiene el péptido en el sitio A pasa al P. El desplazamiento hace que el ribosoma avance 3 nt por el mRNA.
Tras la translocación, la cooperación negativa entre E y A hace que no pueda entrar otro aa-tRNA nuevo en A hasta que el que hay en E no ha salido

  TERMINACION
Determina la conclusión de la síntesis de la proteína cuando el sitio A del ribosoma es abordado por el codón de terminación del ARNm  (UUA, UGA o UAG, indistintamente). Ello deja al sitio A sin el esperado aminoacil-ARNtAA, aunque pronto es ocupado por un factor de terminación llamado eRF (eucaryotic releasing factor), que sabe reconocer a los tres codones de terminación.

7.4 Etapas de la síntesis de proteínas en organismos eucarióticos.
El mecanismo de eucariotas es básicamente el mismo que el de procariotas, con la mayor parte de las diferencias acumuladas en la iniciación. Las principales son:
  • El ribosoma y sus subunidades son más grandes (40S + 60 S → 80S).
  • Los rRNA son mayores y hay más proteínas por subunidad ribosómica.
  • La subunidad mayor contiene los rRNA 28S y 5S, pero además una 5,8S adicional que no existe en los procariotas.
  • El ribosoma no tiene sitio E.
  • El mRNA es diferente y sus elementos distintivos son importantes.
  • Durante el viaje al citoplasma, el mRNA puede adquirir una estructura secundaria que el ribosoma tiene que eliminar antes de traducirlo.
  • El codón de iniciación es siempre AUG y no hay secuencias Shine-Dalgarno.
  • La Met iniciadora no está formilada.
  • El mRNA tiene que prepararse para interaccionar con el ribosoma.
  • Los factores de traducción son distintos (aunque muchos tienen funciones análogas) y se nombran comenzando por «e».

Inicio en los eucariotas

eIF-6 estabiliza la subunidad 60S del ribosoma. eIF-3, eIF-1 y eIF-1A se unen a la subunidad menor. Junto con el aa-tRNA unido a eIF-2, van a formar el complejo 43S. Como en procariotas, los aa-tRNA llegan acompañados de un factor (eIF-2) que se reciclará mediante el factor eIF-2B. Gracias a eIF-5B, el Met-tRNAi se coloca correctamente.
El mRNA es reconocido por eIF-4F a través de la caperuza. El complejo 43S se une al mRNA/eIF-4F y comienza a rastrear el mRNA desde su extremo 5’ en busca del AUG iniciador (normalmente el primero). Este rastreo es necesario para deshacer las estructuras secundarias que se han producido en el traslado del mRNA desde el núcleo hasta el citoplasma. Una vez que lo encuentra se forma el complejo de iniciación 48S. eIF-1 y eIF-1A estabilizan este complejo además de catalizar su disociación si este complejo fuera artefactual.
eIF-4G sirve de punto de anclaje de formación de todos los factores que componen eIF-4F, además de interaccionar con eIF-3 y PABP. eIF-4E reconoce la caperuza. eIF-4A tiene la misión es relajar los 15 primeros nucleótidos del mRNA, así como ayudar en la migración del ribosoma para buscar el AUG iniciador. En la migración le asiste eIF-4B. eIF-3 podría ser una especie de pinza que, mediante interacciones con eIF-1 y complementariedad con los rRNA, estabiliza el complejo 48S e interacciona con eIF-




Elongación en los eucariotas

Los factores de elongación que intervienen en eucariotas son análogos a los procariotas:
·         eEF-1α que es una proteína G, análogo a EF-Tu (EF-1A) [el que aporta los aminoacil-tRNA al ribosoma]. Reconoce cualquier tRNA menos el iniciador. Como no tiene afinidad por el ribosoma, se desprende de él cuando el aa-tRNA se fija al ribosoma con hidrólisis de GTP.
·         eEF-1βγ que es análogo a EF-Ts (EF-1B) [su función es reciclar y regenerar el eEF-1α],
·         eEF-2 es otra proteína G análoga a EF-G (EF-2) que interviene en la translocación del ribosoma.



·         Terminación en los eucariotas
·         eRF1 (con estructura que recuerda al tRNA) se une al ribosoma en el sitio A cuando aparece cualquier codón de terminación, alterando las propiedades hidrofóbicas del sitio peptidil-transferasa. También tiene el motivo GGQ que altera la actividad del sitio peptidil-transferasa para que ahora sea el agua quien actúe como agente nucleofílico. El tRNA está en el sitio P del ribosoma y el eRF1 en el sitio A. Para disociar este complejo y regerenar el ribosoma útil, entra en funcionamiento el factor eRF3




7.4.1 Modificación de proteínas postraducción
La cadena polipeptídica surge del ribosoma como una estructura no funcional:
  • debe plegarse para formar la estructura terciara (o cuaternaria) correcta
  • han de sufrir modificaciones postraduccionales como formación de disulfuros, hidroxilaciones, etc
  • han de alcanzar también su localización final donde muy habitualmente van a sufrir rupturas proteolíticas específicas
  • se recambian si son erróneas o si son muy «viejas»

Plegamiento
Todavía no se sabe con certeza cómo la información de una secuencia primaria de aminoácidos guía su estructura tridimensional. El plegamiento comienza en cuanto se sintetizan más de 30 aa —son los que el ribosoma protege—. Por ejemplo, la ß-galactosidasa comienza a formar los tetrámeros antes de terminar cada monómero
La formación de las estructuras secundarias
Eliminación de las interacciones de los residuos hidrófobos con el disolvente acuoso. De esta forma se establece la estructura terciaria.
Modificaciones covalentes
Pueden ocurrir una vez finalizada la síntesis del péptido, una vez liberado del ribosoma o, más frecuentemente, de forma simultánea a su síntesis.
- Aminoácidos modificables
Sin tener en cuenta modificaciones del tipo entrecruzamiento, la unión de fosfatidil-inositol, la formación de piroglutamato, la formación de diftamida, la formación de al-lisina o la formación de dionas, los aminoácidos que no se suelen modificar son Gly, Ala (aminoácidos pequeños), Leu, Ile, Val o Trp (aminoácidos hidrófobos).

   - Desformilación
La desformilasa procariótica elimina el formilo de la fMet en la primera posición de las proteínas al poco de aparecer el extremo N fuera del ribosoma.

 
  - Puentes disulfuro
Se trata de la formación de un enlace covalente entre dos Cys de la misma o distintas cadenas polipeptídicas. Se consigue mediante una reacción redox catalizada por la proteína-disulfuro-isomerasa en presencia de glutatión, que sufre el proceso inverso (ruptura de su doble enlace). Si se revierte esta modificación, la proteína se desnaturaliza.
             
                                                                      BIBLIOGRAFÍA
1.-. Avers, Ch. 1987. Biología Celular.
2.- .Brown,C.M; I. Campbell y F.G. Priest 1989. Introducción a la Biotecnología.
3 - Clark. 1996. Plant Molecular Biology.
4.- De Robertos y Robertis, F. K. 1987. Biología celular y molecular.
5.- Gardner, E. J. 1979. Principios de genética.
6 - Glick y Pasternak. 1998..Molecular biotecnology.
7 - Griffiths et al. 1997. Genetica. McGraw-Hill/Interamericana. España.
8 - Griffiths et al. 1999. Genetica moderna. McGraw-Hill/Interamericana. España.
9.- . Karp, G. 1992. Biología celular
10.- . Levine, R. 1981. Genética. Compañía.
11.- Scriban, R. 1992. Biotecnología.
12 - Smith y Wood. 1998. Biologia molecular y biotenología. Addison-Wesley
Iberoamericana
13.- . Stanfield, W. 1978. Genética.
14.- Strickberger, M.W.1976. Genética.
15 - Tamarín, R. 1996. Principios genetica. Reverté.España.
16.- Trevan, M.A; S. Boffey; K.H. Goulding y P. Stanbary 1990. Biotecnología.
17.- Winchester,A.M.1976. Genética.
18.- Wiseman, A. 1986. Principios de Biotecnología.
19.- Waller, J.M y E.B. Gingold. 1988: Biología Molecular y Biotecnología.
20.- Wallace, R.A: Jack,L. King y Gerald P. Sanders. 1991 Biología Molecular y Herencia.